磁珠法血清/血浆游离DNA提取试剂盒
- 50T
产品信息
产品名称 | 产品编号 | 规格 |
磁珠法血清/血浆游离DNA提取试剂盒 | Y3623-50T | 50T |
产品简介
本试剂盒利用超顺性磁珠对核酸的可逆吸附作用,再搭配独特的缓冲体系,可高效的结合较小的DNA片段(50-500 bp),并最大限度地减少了较大片段如基因组DNA的结合。本产品能够快速、可靠的从小量新鲜或冻存的血清、血浆、尿液等无细胞体液中分离游离DNA,分离得到的产物可用于YCR扩增、测序和基因分型等下游相关实验。
储存与运输
Proteinase K和Carrier RNA冰袋(wet ice)运输,-20℃保存;其余试剂室温运输,室温储存;有效期12个月。
组成
Component Number | Component | G3612-50T |
Y3623-1 | Buffer GBL | 20 mL |
Y3623-2 | Buffer GPD | 14 mL(使用前加入18mL无水乙醇) |
Y3623-3 | Buffer GPW | 14 mL(使用前加入56mL无水乙醇) |
Y3623-4 | Proteinase K | 1 mL |
Y3623-5 | Carrier RNA | 50 μL |
Y3623-6 | SweMag Beads | 1.5 mL |
Y3623-7 | Buffer TE | 10 mL |
说明书 | 1份 | |
使用前须知(请仔细阅读)
1. Buffer GBL如有沉淀现象,请于37℃加热溶解,待恢复至室温后使用。
2. 使用前请向Buffer GPD中加入18 mL无水乙醇,混匀后使用。
3. 使用前请向Buffer GPW中加入56 mL无水乙醇,混匀后使用。
操作步骤
1. 取200 μL的血清、血浆、尿液等样品至1.5 mL离心管中,起始量不足200 μL可用PBS或Nuclease-free Water补至200 μL。
2. 向离心管加入400 μL Buffer GBL,20 μL Proteinase K和1 μL Carrier RNA,充分混匀后于56℃孵育10 min,期间颠倒混匀2-3次;
3. 加入500 μL异丙醇,颠倒混匀,再加入30 μL SweMag Beads(SweMag Beads使用前需涡旋至分散均匀);
4. 涡旋振荡混匀后,室温放置10 min,期间使用移液器或涡旋仪混匀2-3次,至磁珠分散均匀;
5. 将离心管移至磁力架上静置30 s,直至磁珠完全吸附,将离心管随磁力架温和地上下颠倒数次,使管壁残留的磁珠冲刷下来,待上清清澈后,吸弃上清(为避免影响提取效率,请勿将磁珠吸出);
6. 移开磁力架,加入600 μL Buffer GPD(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),使用移液器轻轻吹打至磁珠分散均匀,将离心管移至磁力架上静置30 s,再将离心管随磁力架温和地上下颠倒数次,使管壁残留的磁珠和盐分冲刷下来,待上清清澈后,吸弃上清(为避免影响提取效率,请务必吸尽离心管内残留的液体);
7. 移开磁力架,加入600 μL Buffer GPW(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),使用移液器轻轻吹打至磁珠分散均匀,将离心管移至磁力架上静置30 s,再将离心管随磁力架温和地上下颠倒数次,使管壁残留的磁珠和盐分冲刷下 来,待上清清澈后,吸弃上清(为避免影响提取效率,请务必吸尽离心管内残留的液体);
8. 重复操作步骤7;
9. 将离心管盖打开,室温放置5–10 min,使乙醇完全挥发(避免磁珠过度干燥,以免影响核酸得率);
10. 移开磁力架,向离心管中加入30-50 μL Buffer TE或Nuclease-free Water,用移液器轻轻吹打至磁珠分散均匀,室温静置5 min;
11. 将离心管置于磁力架上,直至磁珠完全吸附,吸取上清至一新的Nuclease-free离心管中,即得高纯度的游离DNA。
注意事项
1. 样品应避免反复冻融,长期保存可置于-80℃冷冻保存。
2. 洗脱时可能存在磁珠残留,吸取样本时应尽量避免吸入磁珠。
3. 使用前请详细阅读使用说明,严格按照使用说明书操作。如被处理样本中含致病性活病毒等,应遵守国家有关实验室生物安全规范的要求。
产品仅供科研用途,不用于临床诊断!
附操作流程简图

(产品包装升级中,以实物为准。)
| 货号 | 名称 | 规格 | 价格 | 操作 |
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| 货号 | 名称 | 规格 | 价格 | 操作 |
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