产品信息

产品简介

目前最常用的蛋白浓度定量检测方法有两种，即Bradford法和BCA法。BCA法定量检测蛋白的基本原理是基于双缩脲反应，即在碱性条件下，Cu²⁺被蛋白质还原成Cu⁺，随后Cu⁺与BCA（Bicinchonic acid，一种显色剂）发生螯合反应，每两分子BCA螯合一个Cu⁺，生成紫色的水溶性复合物，该物质在562 nm处有最高吸收值，且颜色深浅与蛋白质浓度一定范围内成正比，因此可用于蛋白质的定量检测，蛋白浓度在50-2000 μg/mL浓度范围内有较好的线性关系。

本方法不受绝大部分样品中化学物质的影响，可以兼容样品中高浓度的去垢剂，包括浓度高达5%的SDS，5%的Triton X-100，5%的Tween-20、60、80等。但螯合剂和高浓度还原剂会影响检测结果，需确保样品中无EGTA，EDTA浓度低于10 mM，DTT低于1 mM，β-巯基乙醇低于1 mM。如样品中含有螯合剂或还原剂，可考虑本公司其他产品Y2012 Bradford法蛋白定量检测试剂盒。

储存与运输

整套试剂可常温运输；蛋白标准品（BSA）2-8℃保存，有效期12个月。配制成蛋白标准溶液后需-20℃保存，并在6个月内使用。其余试剂常温保存，有效期12个月。

组成

操作步骤

1. 配制蛋白标准贮备液：取1 mL蛋白标准配制液加入到蛋白标准品（BSA）蛋白标准管中，将25 mg蛋白标准品完全溶解，即得到浓度为25 mg/mL的蛋白标准贮备液。配制成的蛋白标准溶液可-20℃长期保存。

2. 配制蛋白标准工作液：取适量25 mg/mL蛋白标准贮备液，用PBS或生理盐水（建议用与待测样本一致的缓冲液）稀释50倍，得到终浓度为0.5 mg/mL的蛋白标准工作液。注意稀释时按照10倍梯度方法稀释，确保稀释准确。

3. 绘制标准曲线（酶标仪法）：将蛋白标准工作液分别按0，1，2，4，8，12，16，20 μL加到96孔板中，然后用PBS或生理盐水依次加20，19，18，16，12，8，4，0 μL将上述梯度工作液补足到20 μL。得到蛋白浓度依次为0，25，50，100，200，300，400，500 μg/mL的梯度曲线。

4. 准备待测样品：将待测的蛋白样品进行适当稀释（可通过预实验检测，使样品蛋白浓度在标准曲线范围内，确保检测结果可信），按照每个样品20 μL的量加到96孔板中。待测样品与蛋白标准品用相同溶液稀释。

5. 配制BCA显色工作液：将BCA试剂与硫酸铜溶液按照50:1体积比充分混合均匀，得到BCA显色工作液。BCA显色工作液可室温保存，24 h内使用。每个待测样品需200 μL，建议按需配制，避免浪费。

6. 检测：向标准曲线样品孔及待测样品孔中每孔加入BCA显色工作液200 μL，充分混匀（可将96孔板放在振荡器上振荡30 s），37℃反应30 min后，以标准曲线0号做参比，在562 nm波长下比色测定，记录各孔吸光度值。（注：也可以在室温反应2 h，或60℃反应30 min。如果蛋白浓度较低，建议置于60℃反应）

7. 计算：以标准曲线中梯度蛋白含量（μg/mL）为横坐标，吸光值为纵坐标，绘出标准曲线。根据所测样品的吸光值，在标准曲线上即可查得相应孔中待测样品的蛋白浓度（μg/mL），再乘以样品稀释倍数即为待测样品实际蛋白浓度。

注意事项

1. BCA法测定蛋白浓度受温度和时间的影响较大，吸光度值会随着时间的延长或温度升高而变化，如果不能精确控制显色反应的时间和温度，建议每次测定都需要做标准曲线。

2. 在进行蛋白标准贮备液的配制时，需确保溶解充分。稀释配制蛋白标准工作液时建议10倍梯度稀释，不要一次稀释50倍，以免产生较大误差。

3. 为保证蛋白的精确定量，样品的提取和蛋白标准品的稀释配制最好选用相同的缓冲液，同保证两者检测条件一致。如果缓冲液本身就有较高的背景值，建议使用其他的方法测定。

4. BCA试剂在低温条件下出现结晶沉淀时，可37℃温浴使其溶解，不影响使用。

5. 操作时请穿实验服，并佩戴一次性手套。

产品仅供科研用途，不用于临床诊断！

（产品包装升级中，以实物为准。）